Информация о достижении

Актуализация роли спектрального состава света в регуляции биохимического гомеостаза растительной клетки

В рамках совместной работы было проведено комплексное исследовано влияния монохроматического освещения на ростовые и биосинтетические показатели клеток растений, реализующих различные биосинтетические пути, артишока обыкновенного (C. scolymus) и воробейника краснокорневого (L. erythrorhizon). Мы показали, что синий монохроматический свет активирует биосинтез фенилпропаноидов и блокирует синтез изопреноидов, тогда как красный имеет противоположный эффект. Более того, увеличение интенсивности синего светового воздействия приводит к гибели клеток, в то время как красный свет оказывает положительный эффект на рост вне зависимости от интенсивности. На основе полученных данных нам впервые удалось схематизировать роль спектрального состава света в регуляции биохимического гомеостаза растительной клетки, что открывает новые перспективы в светозависимой регуляции распределения клеточных ресурсов.
Рисунок 1. Фитобокс и характеристики освещения. Внешний вид лампы, состоящей из 24 светодиодов (a); ростовые шкафы (б–д) с различными вариантами искусственного освещения (слева направо): тёплый белый и монохроматические источники, такие как красный и зелёный, а также бихроматические источники, сочетающие красный и синий. Представлен нормированный уровень облученности излучения тёплого белого и монохроматических источников света в зависимости от длины волны (нм) (е).
Рисунок 4. Совместное действие красного света и глицерата меди на рост и содержание шиконина в каллусах L. erythrorhizon. Накопление биомассы (a, г/л СВ), содержание шиконина (б) и продуктивность (в) были рассчитаны для каллусов L. erythrorhizon, выращенных в контрольных и экспериментальных условиях. Спектрофотометрический анализ производных шиконина в каллусах L. erythrorhizon, культивируемых в течение 30 дней в условиях Т, темноты и монохроматического красного света с интенсивностью 50 мкмоль×м-2× с-1. Каллусы L. erythrorhizon выращивали на питательных средах с добавлением глицерата меди в стандартной концентрации (0,3 мг/л) и с увеличением концентрации до 1,2 и 2,4 мг/л. Среднее значение ± стандартная ошибка среднего используются для отображения данных из трех отдельных исследований с десятью биологическими повторами. Звездочки или различные буквы над линиями погрешностей указывают на статистически значимые различия (ANOVA, p ˂0,05).
Рисунок З. Содержание кофеилхинных кислот в каллусах С. cardunculus, выращенных при различных условиях освещения. Содержание моноКХ (а) и диКХ кислот (б) в C. cardunculus (мг/г СВ), выращенных в течение 30 дней под различными световыми воздействиями: Т, темнота; тепло-белые, синие, красные и зеленые световые воздействия обозначены как Б, С, К и З, соответственно. Перечисленные световые варианты были использованы с интенсивностью 50, 100, 300 и 600 мкмоль× м-2с-1. Данные, полученные из трех независимых экспериментов с десятью биологическими репликами представлены как средние, а различные буквы над решетками указывают на статистически значимые различия (ANOVA, p ≤ 0,05).
Рисунок 2. Рост культур С. cardunculus, культивируемых при различных световых обработках. Морфология (а) и накопление биомассы (б, г/Л) 30-дневных каллусов C. cardunculus (инокулят 2 г СВ на 50 мл твердой среды), выращенных в течение 30 дней под различными световыми обработками: темнота, теплый белый, синий, красный и зеленый свет обозначены как Т, Б, С, К и З, соответственно. Перечисленные световые варианты были использованы с интенсивностью 50, 100, 300 и 600 мкмоль× м-2с-1. Данные, полученные из трех независимых экспериментов с десятью биологическими репликами представлены как средние, а различные буквы над столбцами указывают на статистически значимые различия (ANOVA, p≤0,05).
Рисунок 5. Влияние монохроматического и бихроматического светодиодного освещения на вторичный метаболизм в каллусах L. erythrorhizon. Шиконин и шиконофураны являются побочными продуктами геранилгидрохинона. Два ключевых предшественника геранилгидрохинона, геранилпирофосфат (ГПФ), образуются по мевалонатному пути, а п-гидроксибензойная кислота (ГБК) – по фенилпропаноидному пути. Биосинтез ароматического промежуточного продукта ГБК происходит из кумароил-CоА, который является ключевым предшественником для биосинтеза розмариновой кислоты (РК), образующейся из тирозина. Основными производными РК у L. erythrorhizon являются литоспермовая кислота B (ЛКВ) и рабдозин (Sun et al., 2022). Как мы показали в настоящей работе, воздействие монохроматическим зелёным и бихроматическим красным и синим светодиодным светом сдвигало биосинтез со стадии кумароил-СоА на стадию РК, тогда как воздействие низкоинтенсивным красным светом, напротив, сдвигало биосинтез на стадию шиконина. Более того, воздействие низкоинтенсивным красным светом сдвигало биосинтез в сторону шиконина на стадии геранилгидрохинона.
Публикации

Diferential regulation of cafeoylquinic acid production in Cynara cardunculus var. altilis DC calli by modulating qualitative and quantitative LED‑lighting parameters

Veremeichik G.N., Silantieva S.A., Grigorchuk V.P., Tikhonova O.A., Brodovskaya E.V., Subbotin E.P., Tchernoded G.K., Yaroshenko Y.I., Kozhanov S.O., Sibirev A.V., Kulchin Y.N., Bulgakov V.P.

В журнале Plant Biotechnology Reports

DOI: 10.1007/s11816-025-01005-8

Update on the role of different lighting parameters in the regulation of secondary metabolism in Lithospermum erythrorhizon Sieb. et Zucc. calli

Veremeichik G.N., Silantieva S.A., Grigorchuk V.P., Tikhonova O.A., Brodovskaya E.V., Subbotin E.P., Tchernoded G.K., Fedoreyev S.A., Mishchenko N.P., Vasileva E.A., Khopta A.A., Kozhanov S.O., Sibirev A.S., Kulchin Y.N., Bulgakov V.P.

В журнале Plant Cell, Tissue and Organ Culture

DOI: 10.1007/s11240-025-03280-3